液体活检研究
使用NGS研究液体活检中的生物标志物
科学家可以使用液体活检样本来检测和表征血液中存在的各种癌症生物标志物。健康人和未患癌症的人体内没有这些生物标志物。因美纳为癌症生物标志物研究提供创新的新一代测序（NGS）液体活检解决方案，以分析：
- 循环肿瘤细胞（CTC）
- 游离DNA（cfDNA）和循环肿瘤DNA（ctDNA）
- 游离RNA（cfRNA）和循环肿瘤RNA（ctRNA）
- 用于检测和分析的循环蛋白
组织活检的局限性
一些挑战限制了组织活检在转化和临床癌症研究中的应用，包括：
- 无法获得目标组织
- 需要有资质医务人员的专业技能
- 长期重复活检的侵入性
- 肿瘤内和肿瘤间异质性的代表性不足
- 由于手术风险大、组织质量或数量不足以及其他因素，患者不符合传统组织活检的条件
什么是循环肿瘤细胞（CTC）？
CTC是从肿瘤脱落到血液中的细胞。多项研究表明，CTC具有转移潜力，并且与各种癌症类型的侵袭性或晚期疾病以及不良预后有关。虽然CTC可以作为基于液体活检的癌症表征的生物标志物，但它们在血液中含量非常少（平均7.5 mL血液中仅< 1至< 50个CTC），这对检测和表征而言是一个重大挑战。基于NGS的技术可以高通量检测低水平的CTC，为癌症筛查和早期检测开辟了一个令人兴奋的前沿领域。
常用的CTC分离方法包括：
- 根据抗原表达（例如上皮细胞粘附分子（EpCAM））富集CTC
- 去除非CTC，如血细胞和免疫细胞
- 白细胞去除术
单细胞分离和单细胞测序方法的技术进步使研究人员能够在基因组、转录组和表观基因组水平上对单个CTC进行详细分析。将液体活检与CTC的单细胞测序相结合可以阐明导致肿瘤生物学的细胞异质性。
cfDNA中的甲基化模式
异常的甲基化模式是许多癌症的标志。DNA甲基化的变化发生在肿瘤发生的早期，会导致大多数基因组处于低甲基化状态，而CpG岛处于高甲基化状态。
这种整体甲基化模式的变化导致基因组不稳定和肿瘤抑制基因沉默，从而推动肿瘤进展和转移。重要的是，多项研究表明，ctDNA的甲基化模式再现了原发细胞/组织中存在的模式。这表明ctDNA甲基化的液体活检分析可用于癌症的早期检测、原发组织的分析、微小残留病（MRD）的监测、治疗反应的监测等。
游离RNA（cfRNA）和循环肿瘤RNA（ctRNA）
血液中的多种细胞类型以及癌细胞可以释放cfRNA。这些ctRNA是潜在的生物标志物，可以通过液体活检进行检测，以识别特定癌症、检测癌症的发生、揭示原发组织、阐明疾病的分子机制、监测治疗反应等。
与在每个细胞/组织中都相同的DNA（遗传变异除外）不同，RNA在不同细胞类型和组织之间呈现动态的差异表达。这使得ctRNA可用于检测癌症并有望用于在体内定位癌症。RNA表达的多样性还有助于利用ctRNA在疾病早期确定癌症亚型并对其进行分类，这一点很重要，因为即使是与同一器官或组织相关的癌症，其进展、治疗方案和预后也存在很大差异。
液体活检中的短链RNA和长链RNA：如何对它们进行测序以及它们提供的关于癌症的信息
本次因美纳网络研讨会上，主讲人介绍了液体活检样本中长链或短链RNA的测序方法，以及该方法对于癌症研究的意义。
2023液体活检电子书：用于液体活检研究的循环肿瘤细胞、ctDNA和cfRNA测序方法
这本电子书共20多页，提供了利用NGS和芯片全面表征液体活检样本的综合工作流程。
- 液体活检分析物概述
- 研究示例、示意图和表格概述了循环肿瘤细胞（CTC）测序、循环肿瘤 DNA（ctDNA）甲基化分析、ctDNA测序和游离RNA（cfRNA）测序的每个步骤
- 应用说明、供下载的方法指南和更多资源的链接
推荐的液体活检研究解决方案
作为基因组学技术的先锋，因美纳提供经过验证的集成工作流程和创新解决方案，适用于癌症研究的液体活检分析物测序。
参考文献
- Plaks V, Koopman CD, Werb Z. Circulating tumor cells. Science. 2013;341(6151) 1186-1188. doi: 10.1126/science.1235226.
- Cristofanilli M, Budd GT, Ellis MJ, et al. Circulating tumor cells, disease progression, and survival in metastatic breast cancer. N Engl J Med. 2004351(8):781-791. doi: 10.1056/NEJMoa040766.
- Huang J, Wang L. Cell-free DNA methylation profiling analysis-technologies and bioinformatics. Cancers (Basel). 2019;11(11):1741. doi: 10.3390/cancers11111741.
- Luo H, Wei W, Ye Z, Zheng J, Xu R. Liquid biopsy of methylation biomarkers in cell-free DNA. Trends Mol Med. 2021;27(5):482-500. doi: 10.1016/j.molmed.2020.12.011.
- Warton K, Lin V, Navin T, et al. Methylation-capture and Next-Generation Sequencing of free circulating DNA from human plasma. BMC Genomics. 2014;15(1):476. doi: 10.1186/1471-2164-15-476.
- Kopreski MS, Benko FA, Gocke CD. Circulating RNA as a tumor marker: detection of 5T4 mRNA in breast and lung cancer patient serum. Ann NY Acad Sci. 2001;945:172-178.
- Perhavec A, Cerkovnik P, Novakovic S, Zgajnar J. The hTERT mRNA in plasma samples of early breast cancer patients, non-cancer patients and healthy individuals. Neoplasma. 2008;55(6):549-554.
- Castellanos-Rizaldos E, Zhang X, Tadigotla VR, et al. Exosome-based detection of activating and resistance EGFR mutations from plasma of non-small cell lung cancer patients. Oncotarget. 2019;10(30):2911-2920. doi: 10.18632/oncotarget.26885.